SILAC(Stable isotope labeling with amino acids in cell culture)是一種細胞培養條件下的穩定同位素標記技術。利用含輕、中或重型同位素標記的必需氨基酸(主要是賴氨酸Lys和精氨酸Arg)培養基培養細胞,標記細胞內新合成的蛋白質,培養7代以上,細胞中幾乎所有蛋白質都被標記。等量混合各類型蛋白質,酶解后進行LC-MS/MS分析,即可得到肽段及蛋白的定性和相對定量結果。
1、蛋白鑒定和定量;
2、差異蛋白的篩選和鑒定。
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項目名稱 | 客戶提供 | 結果交付 | 實驗周期 | 價格 |
SILAC | 已培養7代以上的SILAC標記細胞(同位素培養基由我方提供;如委托我方培養細胞,額外收費) | 1、標記測試結果 | 8-10周 |
![]() | 1.
Gu C.M. et al: Discovery of the Oncogenic Parp1, a Target of bcr-abl
and a Potential Therapeutic, in mir-181a/PPFIA1 Signaling Pathway. Molecular Therapy: Nucleic Acids. 2019,IF= 5.66. |
![]() | 2. Guo, H.C. et al: Quantitative Proteomic Analysis of BHK-21 Cells Infected with Foot-and-Mouth Disease Virus Serotype Asia 1. PLoS ONE. 2015,IF=3.569. |
![]() | 3.
Fan, H. et al. Quantitative proteomics using stable isotope labeling
with amino acids in cell culture reveals protein and pathway regulation
in porcine circovirus type 2 infected PK-15 cells. J Proteome Res. 2012,IF=4.564. |
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中文標題:在mir-181a/PPFIA1信號通路中發現致癌的PARP1,或成為BCR-ABL的靶點并有著潛在的治療作用
發表期刊:Mol Ther Nucleic Acids
影響因子:7.032
發表時間:2019年
合作單位:暨南大學醫學院
運用技術:SILAC定量蛋白質組學(由輝駿生物提供技術支持)
● 研究背景
慢性粒細胞白血病(CML)是一種克隆性骨髓增生性疾病,每10萬人中約有1-2人,占成人白血病總數的15%。MIR-181a在白血病中表達下調,并影響其進展、耐藥性和預后,然而,其靶點在白血病,特別是慢性粒細胞白血病(CML)中的確切作用機制尚不清楚。
● 研究路線
為了確定miR-181a在健康血細胞、人類CML樣本和CML細胞系中的表達水平,研究者首先提取了總RNA,并進行了qPCR分析。結果顯示,miR181a在人CML樣本和CML細胞系中的表達低于其在健康人外周血單個核細胞(PBMC)中的表達(圖1A),表明miR-181a的下調可能在白血病發生中起重要作用。接下來,研究者將SILAC-液相色譜-串聯質譜(LC-MS/MS)和基因芯片分析相結合,系統地研究了miR-181a過表達對CML細胞株K562的影響(圖1C)。SILAC-LC-MS/MS分析表明,重新導入miR181a后,K562細胞中有6000多個蛋白表達下調。然后,用miR-181a模擬物及陰性對照(NC)轉染K562細胞后進行基因芯片分析,發現miR-181a模擬轉染組有1500多個基因表達下調。為了進一步篩選K562細胞中miR-181a的潛在靶點,研究者結合miRNA預測、SILAC-LCMS/MS和基因芯片方法,確定了15個候選miR-181a靶基因。其中,PPFIA1被選作進一步分析(圖1D和1E)。
RT-PCR檢測miR-181a是否能下調K562細胞中PPFIA1mRNA的表達,結果顯示,轉染miR-181a模擬物RNA或PPFIA1小干擾RNA(SiRNA)的K562細胞的PPFIA1mRNA水平明顯低于陰性對照組。隨后,WB檢測miR-181a對PPFIA1蛋白表達的影響,結果顯示,MiR-181a和PPFIA1-siRNA的過表達導致PPFIA1蛋白水平降低(圖1F)。為了確定PPFIA1的3’UTR是否含有功能性miR-181a靶序列,以及這些序列與miR-181a之間是否發生了直接相互作用,研究者進行了雙熒光素酶報告分析。結果如圖1G所示,在293T細胞中,miR-181a轉染可顯著降低psi-Check-PPFIA1-3’UTR的熒光素酶活性,但不能顯著降低psi-CHECKPPFIA1-MUT-3’UTR的熒光素酶活性。這些結果表明,PPFIA1可能是K562細胞中miR-181a的直接靶點。
圖1
接下來,研究者比較了慢性粒細胞白血病細胞和外周血單個核細胞中PPFIA1mRNA的水平。結果如圖1B所示,受試CML細胞和人CML樣本中PPFIA1水平較高。接下來,研究者分別在K562細胞中轉染PPFIA1 siRNA和miR-181a模擬物,結果顯示,MiR-181a轉染組和PPFIA1 siRNA轉染組均以濃度依賴的方式有效增加K562細胞對IM處理的敏感性(圖2A)。Transwell分析還顯示,經miR-181a模擬或PPFIA1 siRNA處理后,CML細胞的侵襲能力顯著降低(圖2B)。最后,轉染miR-181a模擬物和PPFIA1 siRNA的K562細胞集落形成能力均明顯低于NC組(圖2C)。
為了探討PPFIA1在CML中的高表達是否與療效有關,研究者用四甲基偶氮唑鹽比色法分析了IM作用48h后過表達PPFIA1的K562細胞對IM的敏感性,結果顯示過表達PPFIA1明顯抑制IM對K562細胞的殺傷作用,表現為細胞存活率增加(圖2D)。Transwell細胞侵襲實驗結果表明,PPFIA1過表達顯著增強了細胞侵襲力(圖2E)??寺⌒纬蓪嶒灲Y果也表明,過表達PPFIA1的K562細胞集落數顯著高于對照組(圖2E)。這些結果表明,PPFIA1和miR-181a的表達水平與K562細胞的惡性表型相關。
圖2
為了探討PPFIA1-siRNA靶向PPFIA1的治療潛力,研究者將106個熒光素酶標記的K562細胞注射到NSG小鼠體內,并通過生物成像監測siRNA治療的效果。結果顯示,與NC siRNA處理組和賦形劑對照組相比,PPFIA1 siRNA顯著抑制K562-熒光素酶細胞的生長(圖3A);相對熒光素酶水平如圖3B所示,在接種腫瘤時,接受NC-siRNA治療的小鼠的相對熒光素酶水平為1.58e+6,然后在第21天上升到8.01e+8,而在接受PPFIA1 siRNA治療的小鼠中,其相對熒光素酶水平從1.56e+6上升到1.35e+8。這些結果表明,靶向PPFIA1的PPFIA1-siRNA可以抑制K562-熒光素酶細胞在體內的生長。而體重體重作為動物模型癌癥惡病質的重要指標,在腫瘤接種時接受NC-siRNA治療的小鼠的平均體重為27.9g,在第21天下降到26.4g,而接受PPFIA1-siRNA治療的小鼠的平均體重從27.9g增加到28.4g(圖3C)。接受PPFIA1 siRNA處理的NSG小鼠比使用NC-siRNA和空白對照組的小鼠存活時間更長(圖3D)。這些結果表明,PPFIA1 siRNA可能是治療CML的一種有前途的藥物。
圖3
為了了解PPFIA1增強CML細胞侵襲性和克隆原性的機制,研究者進行了磷酸陣列檢測,通過計算兩個樣品(PPFIA1-siRNA/NC和miR-181a mimic/NC)在248個位點特異的磷酸化位點上的磷酸化比率確定兩者之間的差異(圖4A)。在miR-181a模擬轉染組中,23個蛋白位點的磷酸化水平降低,其中7個位點與NC轉染組相比降低了30%(圖4B)。PPFIA1 siRNA轉染降低了60個蛋白位點的磷酸化,其中8個位點降低了50%(圖4C)。值得注意的是,通過對磷酸化降低比例的比較,研究者發現三種磷酸化靶點,KIT Tyr721、P38絲裂原活化蛋白激酶(MAPK) Tyr182和血管內皮生長因子受體2 (VEGFR2) Tyr951位點,它們的磷酸化通常被miR-181a mimic和PPFIA1-siRNA處理降低(圖4D)。
KIT與CML發病機制有關,KIT表達BCR- ABL轉導的小鼠髓系細胞對酪氨酸激酶抑制劑不太敏感。因此研究者推測miR-181a的靶點PPFIA1可能通過激活K562細胞的KIT信號通路促進惡性表型。在穩定過表達PPFIA1的K562細胞株中,磷酸化KIT Tyr721的表達顯著增加(圖4E),而使用PPFIA1- siRNA抑制其表達則會產生相反的效果(圖4F)。這些數據表明,PPFIA1可能通過激活CML中的KIT通路而發揮致癌作用。
圖4
為了探討PPFIA1和KIT之間的關系,研究者在K562細胞中異位過表達FLAG-PPFIA1,并進行BCR/ FLAG免疫沉淀(IP)檢測。采用SDS-PAGE對BCR和FLAG親和純化的IP產物進行分離,并進行質譜分析,結果顯示,在K562細胞中,PARP1同時與外源性PPFIA1和內源性BCR相關(圖5A)。分子對接分析表明,PARP1催化結構域可以與PPFIA1 (PDB: 3TAC)和ABL1 (PDB: 5HU9)結合(圖5B,C)。ABL1的結構域取自PDB (F-actin PDB),分子對接分析結果顯示,ABL1的F-actin結構域可以與PARP1的催化結構域對接(圖5D),而SH2結構域不能與PARP1的催化結構域對接。由于無法獲得BCR/ABL融合蛋白,研究者純化了ABL的每個結構域,并進行了SPRi分析,結果證實ABL1的F-actin結構域可以與PARP1結合,與分子對接分析結果一致(圖5E)。
有趣的是,除了分子對接分析表明PARP1可以與PPFIA1相互作用外,IP實驗也可以識別這種相互作用。如圖5F-5I所示,PARP1與PPFIA1和ABL1相互作用,而且可能是PPFIA1或BCR/ABL的重要下游分子?;谶@些結果,研究者推測PARP1介導了PPFIA1和KIT過表達之間的關系。
圖5
PARP1在參與DNA修復和轉錄的幾個蛋白上形成分支多聚(ADP)核糖(PAR)聚合物,其中,PARP1是NF-kB轉錄調節復合物的關鍵成分。因此,研究者推測PPFIA1通過涉及PARP1、P65和KIT的軸參與白血病的生長。與假設一致,在K562細胞中強制表達PARP1導致P65表達水平上調,而使用奧拉帕尼(PARP1抑制劑[PARPi])降低PARP1表達則導致P65下調(圖6A-6C)。此外,在K562細胞中強制表達P65導致KIT mRNA和蛋白上調,而P65- siRNA下調P65表達則導致KIT水平下調(圖6D-6F)。這些數據表明,PPFIA1通過與PARP1相互作用參與了KIT水平的調控,而PARP1調節NF-kB-P65的轉錄活性。PPFIA1/PARP1/NF-kB-P65/KIT可能在CML中構成了一個調控軸。
接下來,為了探索靶向PARP1在CML中的治療潛力,研究者研究了奧拉帕尼對穩定表達PPFIA1的K562細胞的影響。奧拉帕尼顯著抑制了表達PPFIA1的慢病毒轉化細胞的集落形成能力(圖6G)。為了驗證奧拉帕尼可能抑制CML在體內的進展這一假設,研究者將Baf3-P210細胞移植到用3Gy X射線照射的BALB/c小鼠中。移植小鼠每天單獨服用奧拉帕利布或卒中生理鹽水溶液(賦形劑對照),連續7天。接受奧拉帕利治療的動物比空載組的動物存活時間更長(圖6H)。這些結果表明,PARP是克服慢性粒細胞白血病的一種有前途的治療方法。
圖6
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